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當前專題

TP4039:43%高脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料
Lieber-DeCarli Ethanol Liquid Diet(high fat 43%,TP4039)

一、43%高脂Lieber-DeCarli Alcohol Liquid Diet介紹


Lieber-DeCarli標準型(regular type)酒精液體飼料已經是高脂型(35%)。由于LD對飼料的分型是根據標準型定義的,43%脂肪熱量的酒精液體飼料稱為高脂肪型,而實際上屬于超高型的酒精液體飼料。這種飼料的特點是極高脂肪和極低碳水化合物,其中,碳水化合物只有8.5%。

43%高脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料
【1】模型飼料:

脂肪43%,蛋白質12.5%,碳水化合物8.5%, 酒精36%。

南通特洛菲飼料科技有限公司生產的該模型飼料的代碼:TP4039;

【2】對照飼料:

脂肪43%,蛋白質12.5%,碳水化合物44.3%。

南通特洛菲飼料科技有限公司生產的該對照飼料的代碼:TP4039C;

二、TP4039高脂型Lieber-DeCarli ethanol liquid diet的用途


LD觀察的不同脂肪含量情況下大鼠肝臟甘油三酯含量

Effect of varying amounts of dietary fat on hepatic fat accumulation produced by ethanol. Hepatic triglycerides were measured in seven groups of rats given ethanol (36% of calories) with a diet of normal protein) content. Average hepatic triglyceride concentration in the control animals is indicated by a dotted line.

該飼料由于脂肪含量極高而碳水化合物含量極低,一般可用于:

1. 酒精性脂肪肝造模及相關機制的研究。

將TP4039用于酒精性脂肪肝造模時,肝臟脂肪沉積非常嚴重(見右圖中右起第一個bar,是正常的7-8倍),而標準型引起的肝臟沉積是正常的5倍。要特別注意的是,應當優先使用TP4030(標準型),這是因為TP4039中脂肪過高、碳水化合物過低,形成的是酮體代謝和酒精的聯合作用。

由于4.9%極低脂肪液體飼料胃管灌注(IEI法)能夠模擬43%高脂液體飼料喂養所致的脂肪肝,研究者認為,43%高脂液體飼料所致酒精性脂肪肝應該是由于飼料所致肝內甘油三酯的合成過多而不是源于飼料脂肪進入血液后在肝臟的沉積。

2. 酮體與酒精的相互作用。

3. 觀察脂肪不同含量時酒精效應的比較,TP4039作為高脂、低碳水化合物使用。

三、TP4039選購和使用的注意點


TP4039是酒精熱量為36%、蛋白質熱量12.%、碳水化合物熱量8.5%的液體飼料。如果希望降低酒精熱量并且提高蛋白質熱量的低碳水化合物酒精液體飼料,可以選用TP4060(Lindros酒精液體飼料),該飼料是脂肪44%, 蛋白質16%, 碳水化合物5.5%, 酒精34.5%。

關于Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料的詳細介紹,請點擊“Lieber-DeCarli酒精液體飼料和注意事項”。

請特別注意:購買后應當及時向公司索取以下資料:

《液體飼料配制方法》

《酒精液體飼料喂養方法》

《怎樣根據研究的需要調整酒精的配比》

 

References:

D'Souza El-Guindy NB, Kovacs EJ, De Witte P, Spies C, Littleton JM, de Villiers WJ, Lott AJ, Plackett TP, Lanzke N, Meadows GG. Laboratory models available to study alcohol-induced organ damage and immune variations: choosing the appropriate model. Alcohol Clin Exp Res. 2010 Sep 1;34(9):1489-511.

Phytother Res. 2009 Apr;23(4):525-32. doi: 10.1002/ptr.2665. Trans-resveratrol alone and hydroxystilbenes of rhubarb (Rheum rhaponticum L.) root reduce liver damage induced by chronic ethanol administration: a comparative study in mice. Raal A, Pokk P, Arend A, Aunapuu M, J?gi J, Okva K, Püssa T.

Siegmund SV, Haas S, Singer MV. Animal models and their results in gastrointestinal alcohol research. Dig Dis. 2005;23(3-4):181-94.

Tsukamoto H, Lew G, Larkin EC, Largman C, Rao GA. Hepatic origin of triglycerides in fatty livers produced by the continuous intragastric infusion of an ethanol diet. Lipids. 1984 Jun;19(6):419-22.

Lieber CS, DeCarli LM. The feeding of alcohol in liquid diets: two decades of applications and 1982 update. Alcohol Clin Exp Res. 1982 Fall;6(4):523-31.

Lieber CS, Jones DP, Decarli LM. Effects of prolonged ethanolo intake: Production of fatty liver despite adequate diet. J Clin Invest. 1965 Jun;44:1009-21.

Inhibition of the chronic ethanol-induced fatty liver by antioxidant administration. Hartman AD, Di Luzio NR. Proc Soc Exp Biol Med. 1968 Jan;127(1):270-6.

 



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