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當前專題

TP4031:10%低脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料
Lieber-DeCarli Ethanol Liquid Diet(low fat 10%,TP4031)

一、Lieber-DeCarli Alcohol Liquid Diet(low fat 10%)介紹


LD觀察的不同脂肪含量情況下大鼠肝臟甘油三酯含量

Effect of varying amounts of dietary fat on hepatic fat accumulation produced by ethanol. Hepatic triglycerides were measured in seven groups of rats given ethanol (36% of calories) with a diet of normal protein) content. Average hepatic triglyceride concentration in the control animals is indicated by a dotted line.

在酒精熱量為36%的情況下,脂肪熱量為10%的酒精液體飼料喂養后,肝臟脂肪沉積最少,也就是說,10%脂肪的低脂酒精液體飼料對肝臟的脂肪代謝影響最小。

因此,10%低脂型酒精液體飼料是研究酒精對肝外組織比較理想的模型飼料,在這種情況下,研究指標受到肝臟的影響較小。

由于Lieber-DeCarli是以標準型(regular type)來衡量其他液體飼料的類型,10%脂肪水平屬于低脂型。然而,需要注意的是,如果用于成年大鼠或小鼠,10%脂肪熱量屬于正常水平,能夠滿足這些動物對脂肪的營養需要量,因此,不屬于低脂飼料。當然,如果用于幼年,那就是名副其實的低脂飼料,因為幼年大鼠或小鼠對飼料脂肪的需要量最低不應該低于13%。

南通特洛菲飼料科技有限公司
10%低脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料
【1】低脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料:

脂肪10%,蛋白質18%,碳水化合物36%, 酒精36%。

南通特洛菲飼料科技有限公司生產的該模型飼料的代碼:TP4031;

【2】低脂型Lieber-DeCarli酒精液體對照飼料:

脂肪10%,蛋白質18%,碳水化合物72%。

南通特洛菲飼料科技有限公司生產的該對照飼料的代碼:TP4031C;

二、TP4031低脂型Lieber-DeCarli ethanol liquid diet的用途


由于這個低脂型酒精液體飼料是針對是否形成脂肪肝而定義的,脂肪熱量不像標準型LD酒精液體飼料那樣高,因此,該低脂型模型飼料特別適用于:

1. 酒精性脂肪肝之外所有方面的研究,包括酒精性肝損傷、酒精對其他器官的作用、其他器官疾病模型復制。

2. 作為成年動物標準型酒精液體飼料的低脂對照。

用來研究低脂情況下酒精的生理或毒性作用時,如果不是用于研究酒精性脂肪肝模型,脂肪熱量10%應該是成年動物酒精液體飼料脂肪的下限,否則有可能由于肝臟功能改變而干擾研究。

3. 作為幼年動物低脂酒精液體模型飼料。

10%低脂型Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料的用途
廣泛應用于大鼠、小鼠、地鼠等動物:

(1)作為標準型LD酒精液體飼料的低脂對照;

(2)用于研究脂肪攝入不高的情況下酒精的生理效應、毒性效應、成癮現象和機理、戒斷癥狀和機理;

(3)酒精性肝損傷模型的復制;

(4)酒精性胰腺炎模型的復制

(5)藥物、食品功能因子、保健食品對酒精性脂肪肝的對抗作用;

(6)藥物、食品功能因子、保健食品對酒精的解毒作用;

(7)酒精與毒素(環境、食物、微生物的毒素)對機體的相互作用。

請注意動物不同種系、品系、年齡、性別的差異。

三、TP4031低脂型Lieber-DeCarli ethanol liquid Diet應用的注意點


10%低脂和12%低脂一般沒有明顯的效應差別,所以,還可以采用12%Lieber-DeCarli酒精液體飼料。如果希望脂肪熱量再低一些,可以選擇5%低脂型,或者更低的2%極低脂肪型Lieber-DeCarli酒精液體飼料

關于Lieber-DeCarli酒精液體模型飼料的詳細介紹,請點擊“Lieber-DeCarli酒精液體飼料和注意事項”。

請特別注意:

1.購買飼料前:

(1)應當做好動物的準備,注意動物的品種、品系、年齡、性別的選擇。

(2)準備好喂養流程的準備。

2. 購買后應當及時向公司索取以下資料:

《液體飼料配制方法》

《酒精液體飼料喂養方法》

《怎樣根據研究的需要調整酒精的配比》

 

References:

Lee SJ, Kim SY, Min H. Effects of vitamin C and E supplementation on oxidative stress and liver toxicity in rats fed a low-fat ethanol diet. Nutr Res Pract. 2013 Apr;7(2):109-14.

Yin H, Hu M, Zhang R, Shen Z, Flatow L, You M. MicroRNA-217 promotes ethanol-induced fat accumulation in hepatocytes by down-regulating SIRT1. J Biol Chem. 2012 Mar 23;287(13):9817-26.

Liangpunsakul S, Sozio MS, Shin E, Zhao Z, Xu Y, Ross RA, Zeng Y, Crabb DW. Inhibitory effect of ethanol on AMPK phosphorylation is mediated in part through elevated ceramide levels. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2010 Jun;298(6):G1004-12.

Ajmo JM, Liang X, Rogers CQ, Pennock B, You M. Resveratrol alleviates alcoholic fatty liver in mice. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008 Oct;295(4):G833-42.

You M, Liang X, Ajmo JM, Ness GC. Involvement of mammalian sirtuin 1 in the action of ethanol in the liver. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008 Apr;294(4):G892-8.

Fischer M, You M, Matsumoto M, Crabb DW. Peroxisome proliferator-activated receptor alpha (PPARalpha) agonist treatment reverses PPARalpha dysfunction and abnormalities in hepatic lipid metabolism in ethanol-fed mice. J Biol Chem. 2003 Jul 25;278(30):27997-8004.

You M, Fischer M, Deeg MA, Crabb DW. Ethanol induces fatty acid synthesis pathways by activation of sterol regulatory element-binding protein (SREBP). J Biol Chem. 2002 Aug 9;277(32):29342-7.

You M, Matsumoto M, Pacold CM, Cho WK, Crabb DW. The role of AMP-activated protein kinase in the action of ethanol in the liver. Gastroenterology 127: 1798–1808, 2004.

 



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